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膀胱平滑肌细胞原代培养
点击次数:795 更新时间:2014-10-29

1、麻醉后消毒,下腹正中切口于膀胱颈(结扎处远端约1~2cm),严格无菌操作取出标本、位于超净台旁

2、在超净台,40u/ml溶液中浸泡5分钟

3、生理盐水漂洗1次

4、D-hanks液漂洗1次

5、放入D-hanks液中,除去粘膜、粘膜下及浆膜

如果是Shame组兔,以10ml注射器抽取约8ml D-hanks液,于粘膜层下注射起泡后,剪去粘膜层,直接剪取平滑肌组织,弃浆膜层及其上未剪下之肌组织。

new: 如果是不全BOO兔,则可将膀胱剪成宽约0.5cm之条状,撕去粘膜层后,助手以一将该组织一端固定,与该组织垂直,并夹持整个横截面,术者同法夹持于附近,助手持第3把提起肌组织,术者以锐性分离肌层;如此,向另一端推进,锐性分离肌条。

6、在超净台,取相当于0.5为X0.5 CM2肌块,室温下将其剪碎成1~2mm碎组织块

7、转移入离心管

8、加入D-hanks液(操作成功) OR Dulbecco

9、离心1000转/min,10分钟 离心半径13cm?弃上清

10、加入I型胶原酶(2mg/ml) 5mg,(II型胶原酶2mg/ml 5mg也可,但效果不如I型胶原酶)

11、不要加入DMEM为主要成分的培养液(否则失活)

12、转移入培养瓶中

13、4度下过夜孵育。

14、加0.25%,36.5度振荡消化15~30min,弃上清。

15、200目(74um)不锈钢网过滤。(可省),转移入离心管,***吹打后待可见物沉淀,吸尽沉淀(避免组织块培养法)

16、离心1000转/min,10分钟 离心半径13cm?弃上清

18、加培养液至10ml(ok)

17、转移入培养瓶中

19、CO2恒温箱中培养

20、12h后收集未贴壁细胞并计数

 
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